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    產(chǎn)品中心

    當(dāng)前位置:首頁  -  產(chǎn)品中心  -    -  PCR試劑盒  -  96T五種致瀉性大腸埃希氏菌鑒定試劑盒PCR法

    五種致瀉性大腸埃希氏菌鑒定試劑盒PCR法
    產(chǎn)品簡介

    五種致瀉性大腸埃希氏菌鑒定試劑盒PCR法可針對食品、飼料等樣品中的致病微生物的特異核酸片段進(jìn)行擴(kuò)增,儀器實時監(jiān)測擴(kuò)增過程中的熒光信號變化,自動判讀結(jié)果。本產(chǎn)品用于致瀉大腸埃希氏菌的檢測。檢出限為 103 CFU/ml。

    產(chǎn)品型號:96T
    更新時間:2022-04-24
    廠商性質(zhì):生產(chǎn)廠家
    訪問量:3649
    詳細(xì)介紹在線留言

    五種致瀉性大腸埃希氏菌鑒定試劑盒PCR法

    u  產(chǎn)品說明

    五種致瀉性大腸埃希氏菌鑒定試劑盒PCR法可針對食品、飼料等樣品中的致病微生物的特異核酸片段進(jìn)行擴(kuò)增,儀器實時監(jiān)測擴(kuò)增過程中的熒光信號變化,自動判讀結(jié)果。本產(chǎn)品用于致瀉大腸埃希氏菌的檢測。檢出限為 103 CFU/ml。

        產(chǎn)品組成(96 測試)

    222.png

     

       所需儀器

    ABI ,BioRad,TaKaRa PCR 擴(kuò)增儀,電泳儀,凝膠成像儀等電泳配套設(shè)備。使用熒光定量 PCR 儀進(jìn)行定性判讀時則無需電泳設(shè)備

       自備耗材和儀器

    ①滅菌 1.5mL 2.0mL 離心管;②冰盒;③移液器0.5-10μL10-100μL100-1000μL及配套滅菌吸頭;④ 離心機(jī);⑤渦旋混勻器;⑥金屬浴。

       樣品處理

    參照《GB4789.6—2016 食品安全國家標(biāo)準(zhǔn) 食品微生物學(xué)檢驗致瀉大腸埃希氏菌檢驗》中的操作步驟進(jìn)行前增菌。建議使用試劑配套細(xì)菌基因組 DNA 提取系列產(chǎn)品。

       實驗操作

    1.試劑配制(試劑配制區(qū),放置于冰盒中進(jìn)行取出各管試劑,將試劑*解凍,離心 30s。取 12×(所待檢樣品數(shù)+3)PCR 反應(yīng)管,按 12 個一組排列并編號,依次向各管中加入 23μL 12 種反應(yīng)液。

    2.添加模板(樣本制備區(qū),放置于冰盒中進(jìn)行向每管反應(yīng)液中分別加入 2μL 模板(或直接使用無菌吸頭挑取少許待檢菌落至反應(yīng)管中)。加樣示例:(有 N 個待測樣品

    (N+3)12 個一組的反應(yīng)管,按順序第一組 12 管中全部加入 2μL NG-DW,第二組 12管中全部加入 2μLNG-Ecoli,第三組 12 管中全部加入 2μL 的樣品 1 模板,第四組 12 管中全部加入 2μL 的樣品 2 模板,…,最后12 管中全部加入 2μL PG-Ecoli

    蓋好 PCR 管蓋后,渦旋混勻 30s,離心 1min,立即進(jìn)行 PCR 擴(kuò)增反應(yīng)。

    3.擴(kuò)增反應(yīng)(擴(kuò)增及產(chǎn)物分析區(qū)

    按下列條件設(shè)置擴(kuò)增反應(yīng):(如需使用熒光法進(jìn)行檢測請選擇 FAM 通道

    PCR 循環(huán)

    熒光收集位點

    37

    10 分鐘

    1 個循環(huán)

    95℃

    10 分鐘

    1 個循環(huán)

    95℃

    30

     

    30 個循環(huán)

    63 ℃

    30

    72℃

    90

    72℃

    5 分鐘

    1 個循環(huán)

     

    4.產(chǎn)物電泳(擴(kuò)增及產(chǎn)物分析區(qū)

    稱量 4. 0g 瓊脂糖粉,加入至 200 mL 1×TAE 電泳緩沖液中,充分混勻。使用微波爐反復(fù)加熱至沸騰,直到瓊脂糖粉*融化形成清亮透明的溶液。待瓊脂糖溶液冷卻至 60右時,加入溴化乙錠( EB )至終濃度為 0.5μg/mL, 充分混勻后,輕輕倒入已放置好梳子的模具中,凝膠長度要大于 10cm,厚度宜為 3mm~5mm。檢查梳齒下或梳齒間有無氣泡,用一次性吸頭小心排掉瓊脂糖凝膠中的氣泡。當(dāng)瓊脂糖凝膠*凝結(jié)硬化后,輕輕拔出梳子,小心將膠塊和膠床放入電泳槽中,樣品孔放置在陰。向電泳槽中加入 1×TAE 電泳緩沖液,液面高于膠面 1mm~2mm。將5μL PCR 產(chǎn)物與 1μL 6×上樣緩沖液混勻后,用微量移液器吸取混合液垂直伸入液面下膠孔,小心上樣于孔中;陽性對照的 PCR 反應(yīng)產(chǎn)物加入到最后一個泳道;第一個泳道中加入 2 μ L 分子量 Marker 。接通電泳儀電源,根據(jù)公式電壓=電泳槽正負(fù)極間的距離(cm×5V/cm 計算并設(shè)定電泳儀電壓數(shù)值;啟動電壓開關(guān),電泳開始以正負(fù)極鉑金絲出現(xiàn)氣泡為準(zhǔn)。電泳 30min~45min 后,切斷電源。取出凝膠放入凝膠成像儀中觀察結(jié)果,拍照并記錄數(shù)據(jù)。

    u  可使用 Gold viewGal-Rad 等等效的核酸熒光染料替代 EB。

    u  推薦使用 DNA MarkerDL2000 100bp ladder,等可指示 100bp~1500bp 條帶的 Marker。

        結(jié)果分析

    1.陰陽性判讀:

    進(jìn)行電泳檢測時,需對比 Marker 進(jìn)行判斷,當(dāng)目的靶標(biāo)對應(yīng)位置出現(xiàn)單一顯著條帶時可判斷該靶標(biāo)為陽性; 否則為該靶標(biāo)檢測為陰性。使用熒光定量 PCR 儀檢測時,檢測孔Ct≤30 時判斷該孔為陽性;當(dāng)檢測孔Ct30 時, 該檢測孔為陰性

    示例電泳圖

    111.png


    2.有效性判讀:

    需同時滿足:1.空白對照中所有泳道均為陰性;2.陰性對照中 uidA 泳道陽性,其余泳道陰性;2.陽性對照中所有泳道陽性,此時可判斷實驗有效。如無法滿足上述條件,則實驗無效,需重復(fù)實驗;如重復(fù)后結(jié)果仍為無效,請于本公司技術(shù)支持聯(lián)系。

    3.結(jié)果判讀:

    在實驗有效的情況下,可根據(jù)下表進(jìn)行判讀:

     

    大腸埃希氏菌類別

    目標(biāo)條帶的種類組合

    EIEC

    ipaH(+)

     

     

    uidA

    (+/-)

    EAEC

    aggR,astApic 中一條或一條以上陽性

    EPEC

    bfpBeae(+,stx1stx2,

    STEC/EHEC

    stx1stx2 中一條或一條以上陽性,eae+/-,bfpB-)

    ETEC

    lt,stpsth 中一條或以上陽性

    u  97%以上大腸埃希氏菌為 uidA 陽性,可參考陰性對照中該基因檢測結(jié)果判斷擴(kuò)增效果;

    u  當(dāng)結(jié)果判定為EPEC 陽性時,若 bfpB 靶標(biāo)為陽性則說明樣品含有典型EPEC;若 bfpB 靶標(biāo)為陰性則說明樣品為非典型EPEC

    當(dāng)結(jié)果判定為STEC/EHEC 陽性時,若 eae 靶標(biāo)為陽性則說明樣品含有典型EHEC;若 eae 靶標(biāo)為陰性則說明樣品為非典型EHEC。


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